К.б.н. Матросова Л.Е., к.в.н. Тремасова А.М., к.б.н. Шамилова Т.А.

ФГБУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности» (ФГБУ «ФЦТРБ-ВНИВИ») г. Казань

Пробиотик в качестве профилактического средства

при Т-2 и афлатоксикозе животных

Повсеместными контаминантами сельскохозяйственной продукции и продуктов питания являются микроскопические грибы, продуцирующие при определенных условиях микотоксины. К наиболее опасным и токсичным микотоксинам относят Т-2 токсин и афлатоксин, характерными клиническими проявлениями которых является нарушение работы органов желудочно-кишечного тракта, сопровождающегося диарей (Иванов А.В. и др., 2008). Отмечающееся при микотоксикозах нарушение микробиоценоза кишечника является предпосылкой для использования в качестве профилактических средств - пробиотиков (Шамилова Т.А. и соавт., 2011; Матросова Л.Е и соавт., 2011).

Целью данных исследований было изучение эффективности пробиотика на основе Bacillus subtilis при Т-2 и афлатоксикозе.

Материалы и методы: Опыты проведены на 40 новорожденных телятах, разделенных по принципу аналогов на 2 группы (опытная и контрольная) по 20 голов в каждой. В рационе стельных коров обнаружены корма контаминированные микроскопическими грибами Fusarium sporotrichiella и Aspergillus flavus и содержащие микотоксины: Т-2 токсин в дозе 0,15 мг/кг и афлатоксин В₁ – 0,2 мг/кг. В молозиве коров выявлен метаболит афлатоксина В₁ - афлатоксин М₁ в дозе 0,005 мг/кг.

Подопытным животным сразу после рождения (до приема молозива) внутрь задавали 10 мл пробиотического препарата, содержащего в 1 мл 2 млрд. микр. кл. Препарат задавали один раз в день в течение 10 суток.

Животных контрольной группы лечили традиционной схемой принятой в хозяйстве (антибактериальные препараты, отвары трав и т.п.).

В ходе проведения опытов оценивалось общее клиническое состояние животных, учитывая выраженность аппетита, температуру тела, реакцию на внешние раздражители, частоту дефекации и характер испражнений, среднесуточный прирост массы тела. На 10, 20 и 30 сут проводили гематологические и биохимические исследования крови с использованием общепринятых методов и используя анализатор «EXPRESS PLUS».

Активность лизоцима устанавливали нефелометрическим методом по А.Г. Дорофейчуку (1968). Определение фагоцитарной активности нейтрофилов проводили по С.А. Кост и М.И. Стенко (1974).

Состояние кишечного микробиоценоза подопытных и контрольных животных оценивали общепринятыми методами согласно методических рекомендаций.

Качественное и количественное определение микотоксинов проводили хроматографическим методом.

Результаты исследований. Наличие микотоксинов в кормах стельных коров оказывает отрицательное влияние на организм молодняка. У новорожденных телят контрольной группы была явно выражена диарея, которая начиналась на первые сутки после рождения и сопровождались частой дефекацией. Диарея отмечалась на 5 сутки после рождения у 35 % телят контрольной группы. В последующие сутки диарея усиливалась, наблюдался профузный понос, животные отставали в росте, отмечалась дегидратация, учащение пульса и частоты дыхания. В дальнейшем развивался цианоз кожи и слизистых оболочек, наблюдалось снижение температуры тела, ослабление пульса и частоты дыхания. В группе контроля пал 1 теленок. При патологоанатомическом вскрытии павшего теленка выявлено катарально-геморрагическое воспаление сычуга, тонкого отдела кишечника, увеличение печени. В слизистой сычуга и кишечника отмечены точечные и полосчатые кровоизлияния. В патологическом материале возбудители инфекционных болезней не выявлялись. При хроматографическом исследовании органов и тканей павшего теленка обнаружен микотоксин афлатоксин В₁, в количестве 0,5±0,01 мкг/кг.

Введение пробиотика телятам снижало выраженность клинического проявления микотоксикозов. Диарея отмечалась только у 2 телят в более поздние сроки и была менее выражена.

Применение пробиотика снижало негативное влияние токсина на прирост массы тела, так среднесуточный прирост подопытных телят был выше, чем у контрольных на 16,2 % (Р<0,05).

При гематологическом исследовании отмечалась тенденция к увеличению количества эритроцитов, гемоглобина и лейкоцитов в опытных группах. Так, количество лейкоцитов на 10; 20 и 30 сут увеличилось на 3,5; 5,7 и 6,0 %, соответственно. Содержание эритроцитов и гемоглобина к концу опыта было выше относительно контрольной группы на 9,4 и 8,7 %, соответственно.

Величина показателей общего белка и глюкозы в крови у животных профилактированной пробиотиками группы, во все периоды наблюдения была выше, чем у контрольных животных.

Применение пробиотика способствовало стабилизации показателей неспецифической резистентности организма. Так, показатели фагоцитарной активности, фагоцитарного индекса и активности лизоцима увеличивались в среднем на 29,2 % (Р<0,01); 42,6 % (Р<0,001); 8,4%, соответственно.

Микробиологическими исследованиями содержимого толстого отдела кишечника контрольных животных обнаружили гемолитические энтерококки, сальмонеллы, дрожжи и микроскопические грибы. Такие же микроорганизмы были выделены и в опытной группе, но их количество было значительно ниже. Количество бифидо – и лактобактерий в сравнении, с группой получавшей пробиотический препарат было ниже на 27,1 и 28,9 % (Р<0,001), соответственно.

Заключение. Показана эффективность использования пробиотического препарата при микотоксикозах, нормализующего клинико-гематологические показатели, микробиоценоз кишечника; стимулирующий клеточный и гуморальный иммунитет, рост и развитие молодняка. Введение пробиотика сокращает частоту случаев диареи - неспецифического симптома микотоксикоза, возникающего в результате подавления микотоксинами роста микроорганизмов нормальной микрофлоры.

Входящие в состав пробиотика спорообразующие бактерии Bacillus subtilis являясь антагонистами условно-патогенной микрофлоры, способствуют росту нормальной кишечной микрофлоры, снижают воспалительные явления в кишечнике и желудке, вырабатывают антибиотические вещества, органические кислоты, ферменты, выводят токсины, не вызывают привыкание и устойчивость патогенной микрофлоры.

Литература:

1. Дорофейчук, В.Г. Определение активности лизоцима нефелометрическим методом / В.Г. Дорофейчук // Лаб. дело. – 1968. - № 1. – С.28-30.

2. Иванов, А.В. Микотоксикозы животных (этиология, диагностика, лечение, профилактика) / Иванов А.В., Тремасов М.Я., Папуниди К.Х. и др. – М.: Колос, 2008 – 177с.

3. Кост, А.Н. Определение фагоцитарной активности лейкоцитов / С.А. Кост, М.И. Стенко // Клиническая гематология животных. – М.: Колос,1974. – С.99-100.

4. Матросова, Л.Е. Профилактика афлатоксикоза у поросят / Л.Е. Матросова, А.В. Иванов, М.Я. Тремасов, Т.А. Шамилова // Свиноводство. – 2011. - №4. – С.62-64.

5. Шамилова, Т.А. Состояние кишечного микробиоценоза поросят при микотоксикозе на фоне применения пробиотика / Т.А. Шамилова, Л.Е. Матросова, Ф.Г. Ахметов // Ветеринарный врач. – 2011. - №1. – С.4-6.