Біологічні науки / 6. Мікробіологія

Кащик О.О., Сідашенко О.І., Воронкова О.С., Вінніков А.І.

Дніпропетровський національний університет ім. Олеся Гончара

ВПЛИВ ІОНІВ МЕТАЛІВ НА ПЛІВКОУТВОРЕННЯ У ЕПІДЕРМАЛЬНОГО СТАФІЛОКОКА

 

Вступ

Аж до кінця минулого століття мікробіологія розвивалась головним чином на основі досліджень чистих культур мікроорганізмів. На сьогоднішній день відомо, що більшість бактерій існують в природі не у вигляді вільних клітин, а у вигляді специфічно організованих біоплівок [3, 10]. Біоплівка (Biofilm) – складний (найчастіше мультивидовий) шар мікроорганізмів, що володіє просторовою та метаболічною структурою співтовариства (колонія) мікроорганізмів, розташованих на поверхні розділу середовищ і занурених у позаклітинний полімерний матрикс [5, 11]. Біоплівки поширені повсюдно. Майже всі види мікроорганізмів, не тільки бактерії і археї мають механізми, за допомогою яких вони можуть осідати на поверхні і агрегуватися один до одного [2,4].

Мікробне угруповання біоплівки більш стійке до впливу несприятливих чинників фізичної, хімічної та біологічної природи. Порівняно з вільно плаваючими бактеріями, біоплівки виявилися дуже стійкими до впливу ультрафіолетового випромінювання, дегідратації, вірусів, антибіотиків і факторів імунного захисту. До того ж у складі плівки бактерії набувають більшої стійкості до умов довкілля [7, 9]. Тому вивчення впливу факторів зовнішнього середовища на формування біоплівки є актуальним питанням сучасних біології та медицині.

Метою роботи було вивчити вплив іонів металів на формування біоплівки у Staphylococcus epidermidis.

Матеріали та методи досліджень

Дослідження впливу концентрації іонів металів на характеристики росту біоплівки проводили шляхом вирощування біоплівки на середовищі з 0,5%, 1% та 2% глюкози. В якості контролю виступало живильне середовище (МПБ) без додавання іонів металів. Для дослідження готували МПБ з різними концентраціями іонів калію та натрію: 5%, 10% та 15% розчини KNO3 та NaCl.

Біоплівки культивували у 6-лунковому планшеті, куди вносили 2 мл середовища з досліджуваними концентраціями солей. Засівали 100 мкл бактеріальної суспензії біоплівкоутворюючого штаму, що містила 1,0 × 104 клітин / мл. Інкубували 5 діб.

Вивчення впливу іонів металів на ріст біоплівки

Вплив іонів К+ на утворення біоплівки S. epidermidis визначали за змінами кількості колонієутворюючих одиниць (КУО), що виросли у плівці культивованій протягом 5 діб. Контроль (без додавання солі) склав – 6,9×107 КУО, при додаванні 5% солі калію (KNO3) кількість клітин становила 6,7×108 КУО, 10% – 3,8×108 КУО, 15% – 3,4×107 КУО (рис. 1).

Рис. 1 Динаміка приросту біоплівки при впливі іонів К+

З приведених на діаграмі даних можна зробити висновок, що 5% та 10% концентрації солі – донора іону K+ здійснювали стимулюючий вплив на розвиток біоплівки, а 15% концентрація, навпаки, інгібувала приріст клітинної масти порівняно з контролем.

Вплив іонів Na+ на утворення біоплівки епідермального стафілококу вивчали за змінами кількості КУО у плівці, яку культивували протягом 5 діб з додаванням солі натрію (NaCl). У контролі кількість КУО складала – 6,9×107 КУО. При використанні 5% концентрації солі вміст клітин у плівці становив 6,7×108 КУО, при 10% – 3,8×108 КУО, 15% – 3,4×107 КУО (рис. 2). Результати дослідів показали, що кількість колоній була максимальною при 5% концентрації Na+, а найменше значення при 15%.

Стійкість і невибагливість стафілококів проявляється в тому, що вони розмножуються в присутності високих концентрацій хлориду натрію (до 10-15%). Саме ця властивість експериментально підтверджується, аналізуючи отримані данні.

Рис. 2 Динаміка приросту біоплівки під впливом різних концентрацій Na+

Про кількісні показники приросту біоплівки робили висновок, що максимальне значення КУО спостерігали при 5% концентрації К+, 10% – проміжне значення, а 15% концентрація інгібувала приріст біоплівки.

Висновки

1. Встановлено, що при культивуванні біоплівки протягом 5 діб на 1 мл середовища приріст клітин становить 6,9 × 107 КУО.

2. Встановлено, що 15% концентрація іонів Na+ та К+ інгібує приріст клітин у біоплівці порівняно із середовищем без додавання цих іонів. Натомість, при 5% та 10% вмісті солей натрію та калію у середовищі спостерігали приріст кількості клітин у біоплівці.

Перелік посилань:

1.   Определитель бактерий Берджи: Пер. с англ. / Под ред. Хоулта Дж., Криля Н., Синта П. и др. в 2-х тт. – М: Мир, 1997. – Т.1 – 430 с.; Т.2 – 368 с.  

2.   Adherence of coagulasenegative staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of staphylococci to medical devices / G.D. Christensen, W.A. Simpson, J.J. Younger [et. al.] // J. Clin. Microbiol. – 1985. – Vol. 22. –P. 996-1006.              

3.   Costerton J.W. Microbial biofilms / J.W. Costerton // Ann. Rev. Microbiol. – 1995. – Vol. 49. – P. 711–745.

4.   Costerton W. Bacterial biofilm: a common cause of persistent infections / W. Costerton, P.S. Steward, E.P.  Greenberg // Science. – 1999. – P. 1318-1322.

5.   Gotz F. Staphylococcus and biofilms / F. Gotz // Mol. Microb. – 2002. – Vol. 43, №6. – P. 1367–1378.

6.   Methods for studying biofilms produced by Staphylococcus epidermidis / M.A. Deighton, J. Capstick, E. Domalewski [et. al.] // Methods Enzymol. – 2001. – Vol. 336. – P. 177-195.       

7.   O’Toolе G.A. Biofilm formation as microbial development / G.A. O’Toolе, H.B. Kaplan, R. Kolter // Ann Rev Microbiol. 2000. Vol. 54. P. 49-79.

8.   Shunmugaperumal T. Biofilm eradication and prevention: a pharmaceutical approach to medical device infections / T. Shunmugaperumal // J. Bacteriol. – 2010. – Vol. 20. – P. 411-415.

9.   Tetz V.V. Extracellular phospholipids of isolated bacterial communities. Biofilms / V.V. Tetz // Med Microbiol: Lett. 2004. Vol. 1. P. 149-55.

10.   Watnick P. Biofilm: city of microbes / P. Watnick, R. Kolter // J. Bacteriol. – 2000. – Vol. 72. – P. 2675-9.

11.   Wolcott R.D. Biofilm / R.D. Wolcott, G.D. Ehrlich // JAMA. 2008. Vol. 299. – 2682 p.