Д.м.н. Панченко К.И. К.м.н. Панченко А.К. аспирант Сухов
Д.В.
Ярославская Государственная Медицинская Академия, Россия
Оценка концентрации этанола в крови и моче по гистологическим изменениям
мозга и печени.
Во всем мире наблюдается тенденция к увеличению потребления
этилового спирта, который, как известно, изменяет работу центральной нервной
системы и способствует повышению уровня травматизма и криминализации общества.
Наибольшая часть преступлений и дорожно-транспортных происшествий совершается в состоянии алкогольного
опьянения [1,2,3]. Оценка концентрации этилового спирта на момент смерти по
морфологическим изменениям в ткани головного мозга является альтернативным, а иногда и единственным (смерть спустя несколько
суток после травмы) методом позволяющим установить факт опьянения и вероятную его
степень, что может иметь существенное значение для расследования уголовных и
административных преступлений. Данный метод может быть использован и при
несоответствии клинических и судебно-медицинских лабораторных данных по
концентрации этанола [4]. Нами
установлено, что имеется корреляция между концентрацией алкоголя (в крови и моче) и трансформацией ряда
гистологических структур головного мозга [5].
Однако, предложенные уравнения множественной регрессии концентраций
этанола как в крови, так и моче, имеют низкий коэффициент детерминации и
значительную ошибку. Поэтому нами был продолжен поиск предикторов уровня
этанольной интоксикации.
Для работы
был использован материал от 40 трупов, разного возраста от 20 до 81 года (49±1),
исследуемых в Рыбинском межрайонном отделении Ярославского бюро
судебно-медицинской экспертизы. Кусочки ткани головного мозга были взяты из
различных отделов головного мозга: кора с субкортикальным белым веществом из
предцентральной извилины и гиппокампа, а также кора и белое вещество мозжечка
(всего 160 кусочков). Умершие имели различную концентрацию этанола в крови
(КЭК) и моче (КЭМ), соответственно 1,3±0,15(1,09÷1,6) и
1,89±0,19(1,4÷2,2). Кусочки мозга фиксировали нейтральным формалином, резали
в криостате и срезы, окрашивали глицинкрезоловым красным[6]. Срезы кусочков
печени, залитых в парафин, окрашивали стандартно гематоксилин-эозином. При
микроскопии изменения печени оценивали в баллах: 1 – жировая дистрофия
гепатоцитов практически отсутствует, 2 – гепатоциты с жировой дистрофией
занимают менее 50% поля зрения, 3 – гепатоцитов с жировой дистрофией более
50% в поле зрения, 4 – определяется картина цирроза печени. При
микроскопии ткани головного мозга в поле зрения микроскопа (40х7) определяли
количество астроцитов с различным количеством отростков, отдельно оценивали
количество зернистых астроцитов (амебоидных астроцитов с зернистостью
цитоплазмы) и количество
олигодендроцитов с перицеллюлярным отеком как с хроматолизом ядер так и
без него. Все подсчеты проводили в среднем из 3-х полей зрения. Оценивали
наличие и характер межтканевого отека белого вещества по [7], присваивая баллы
от 1 до 3 (1 – мелковакуолярный, 2–периваскулярный, 3 – крупновакуолярный), и
наличие гемосидерина в нем в десяти полях зрения, присваивая баллы от 1-го до
10-ти. При исследовании сосудистой системы мозга считали в коре головного мозга
количество микрососудов со сладжем в поле зрения микроскопа, определяли
максимальный диаметр (мкм) самого крупного сосуда в белом веществе (на микрофотографиях, сделанных системой
цифровой фото-микроскопии ImageScope), используя программу Image
Tool 3.0. Кроме того, определяли окраску сладжей (ОС1 и ОС2). ОС1
– коды: отсутствие сладжей – 100, только красные – 101, желтые и красные – 102,
только желтые – 103. ОС2 – коды: отсутствие
сладжей – 100, только желтые – 101, желтые и красные – 102, только красные – 103.
Полученные данные обрабатывали с помощью программы Statistica 5.5.
Определена регрессия
связей для показателя КЭМ: R=0,78; скорректированный
коэффициент детерминации RI=0,60; F(9,150)=27,5;
p<0,00000; стандартная ошибка регрессии (m) =
1,59 ( табл.1)
Таблица 1
|
Показатели |
β |
mβ |
B |
mB |
t(152) |
p< |
|
Свободный
член |
|
|
-31,09 |
14,01 |
-2,19 |
0,02 |
|
В |
-0,21 |
0,05 |
-0,04 |
0,009 |
-4,17 |
4,9E05 |
|
ПП |
-0,20 |
0,06 |
-0,48 |
0,14 |
-3,29 |
0,001 |
|
А6 |
-0,11 |
0,05 |
-0,68 |
0,31 |
-2,20 |
0,029 |
|
ОО |
0,27 |
0,07 |
0,11 |
0,03 |
3,71 |
0,0002 |
|
ЗА |
0,30 |
0,08 |
0,59 |
0,66 |
3,61 |
0,0004 |
|
ОС1 |
0,12 |
0,05 |
0,31 |
0,13 |
2,28 |
0,02 |
|
КС |
0,37 |
0,05 |
0,38 |
0,05 |
6,45 |
1,4E09 |
|
МО |
0,11 |
0,05 |
0,42 |
0,19 |
2,11 |
0,36 |
|
ДС |
0,12 |
0,05 |
0,10 |
0,04 |
2,37 |
0,018 |
Определена регрессия
связей для показателя КЭК: R=0,74; скорректированный
коэффициент детерминации RI=0,53; F(8,151)=23,4;
p<0,00000; стандартная ошибка регрессии (m) =
1,32 ( табл.2)
Таблица 2
|
Показатели |
β |
mβ |
B |
mB |
t(152) |
p< |
|
Свободный
член |
|
|
20,34 |
9,51 |
2,13 |
0,034 |
|
В |
-0,16 |
0,05 |
-0,02 |
0,008 |
-2,88 |
0,004 |
|
ПП |
-0,25 |
0,06 |
-0,45 |
0,12 |
-3,64 |
0,0003 |
|
А12 |
0,11 |
0,06 |
0,22 |
0,11 |
1,98 |
0,048 |
|
О |
0,17 |
0,07 |
0,04 |
0,02 |
2,30 |
0,022 |
|
ЗА |
0,38 |
0,08 |
0,58 |
0,13 |
4,48 |
0,00001 |
|
ОС2 |
-0,12 |
0,06 |
-0,18 |
0,09 |
-2,01 |
0,045 |
|
КС |
0,34 |
0,06 |
0,27 |
0,05 |
5,37 |
0 |
|
ГБ |
0,13 |
0,06 |
0,30 |
0,15 |
2,0 |
0,047 |
Уравнение регрессии для
показателя КЭМ: (КЭМ=-31,09-0,04хВ-0,48хПП-0,68хА6+0,11хОО+0,59хЗА+0,31хОС1+0,38хКС+0,42хМО+0,10хДС).
Уравнение регрессии для
показателя КЭК: (КЭК=20,34-0,02хВ-0,45хПП+0,22хА12+0,4хО+0,58хЗА-0,18хОС2+0,27хКС+0,3хГБ).
В
которых КЭМ и КЭК – количество (‰) этанола в моче и крови соответственно, В–возраст,
ПП – поражение печени (баллы), А12 и А6
– количество астроцитов с одним или двумя отростками и количество астроцитов с
6 или более отростками, ОО – количество олигодендроцитов с перицеллюлярным
отеком без хроматолиза ядер, О – количество олигодендроцитов с перицеллюлярным
отеком как с хроматолизом ядер, так и без него, ЗА – количество зернистых
астроцитов, КС – количество микрососудов со сладжем в коре головного мозга, МО
– межтканевой отек белого вещества (баллы), ДС – максимальный диаметр
микрососудов белого вещества (мкм), ГБ–гемосидерин в белом веществе головного
мозга, ОС1 и ОС2 – варианты кодировок окраски сладжей.
Исходя из результатов
регрессионного анализа, учитывая t критерии и β коэффициенты, в ткани
головного мозга, максимальное значение для диагностики этанольной
интоксикации имеют зернистые астроциты в белом веществе под
корой и количество микрососудов со сладжем в коре больших полушарий. Не меньшую
значимость имеет перицеллюлярный отек олигодендроцитов в белом веществе мозга. При
этом хроматолиз ядер глии наблюдается лишь в первую стадию этанольной
интоксикации (резорбции) – при максимальной спирта в крови. Наиболее вероятно,
данный факт отображает повышенную работу клеток глии, которые выполняют как
трофическую, так и посредническую функции на данной стадии этанольной
интоксикации. Увеличение зернистых астроцитов в ткани мозга, по-видимому,
обусловлено токсическим воздействие этанола и продуктов его обмена на мозговую
ткань с последующей дистрофией астроцитарной глии. При этом наиболее вероятно
имеет место токсическое воздействие и на интиму сосудов, их спазм в коре и
компенсаторное расширение в белом веществе – токсическая дистония сосудов, с
последующей агрегацией форменных элементов крови и образованием сладжей в коре
головного мозга. Все указанные выше факторы прямо пропорциональны по отношению
к концентрации этанола в крови и моче. Существенное
значение имеют также «немозговые» предикторы – поражение печени и возраст,
которые обратно пропорциональны этанольной интоксикации. Данный факт обоснован
нами в предыдущих работах [5]. Все
остальные признаки имеют меньшую диагностическую ценность, однако необходимо их
дополнительное изучение, возможно с увеличением объема исследуемого материала и
применения дополнительных методов исследования. Среди них, наиболее интересны
изменения тинкториальных свойств сладжей, кодировка которых может отражать либо
резорбцию, либо элиминацию этанола. Степени резорбции соответствует
последовательность: отсутствие – желтые – желтые и красные – красные сладжи. Степени
элиминации соответствует последовательность: отсутствие – красные – желтые и
красные – желтые сладжи. Данный факт
требует дальнейшего изучения и обсуждения.
Литература:
1. Monteiroa M.G.,Rehmb J., Taylorb
B. International Encyclopedia of Public
Health.Alcohol Consumption:
Overview of International Trends. Pan
American Health Organization\ World Health Organization, Washington,DC, USA –
Pages 98-108, 2008
2. Pigolkin I.I., Sidorovich I.V. Characteristic of mortality in the
Russian Federation// Sud. Med. Ekspert, 2011 Jan-Feb;54(1):14-8.
3. Stavroula A.,Papadodima.
Driving under the influence in Greece: A 7-year survey // Forensic Science
International Vol. 174, Issues 2-3, 30 January 2008 – Pages 157-160.
4. Alan Wayne Jones PhD. Biomarkers of recent drinking, retrograde
extrapolation of blood-alcohol concentration and plasma-to-blood distribution ratio
in a case of driving under the influence of alcohol// Journal of Forensic and
Legal Medicine, Volume 18, Issue 5, July 2011, Pages 213-216.
5. Панченко А.К., Сухов Д.В.,
Панченко К.И. Идентификация этанольной интоксикации по трансформации нервных
клеток и нейроглии // Информатика и системы управления N 2 (24) 2010, Системный
анализ в медицине – С.146-149.
6. Панченко К.И., Панченко А.К., Панченко А.Ю. Использование комплексонометрического индикатора глицинкрезолового красного как красителя в нейрогистологии //Судебно-медицинская экспертиза. – 1997. – N 1. – С. 46-47.
7. Казаков В.Н.,
Шлопов В.Г., Волос Л.И. Критерии морфологической дифференциальной диагностики
дементивных состояний // Нейронауки: теоретичні та клінічні аспекти. Том 2, №
1-2, 2006. – С. 20-27.