Ветеринария/1.Ветеринарная медицина
Д. вет.
наук, профессор Гершун В.И., Кравченко А.В.
Костанайский
государственного университета им. А.Байтурсынова, Казахстан
Воздействие
молочнокислых бактерий на жизнеспособность листерий в обрате
Листериозом болеют как дикие,
так и домашние животные. Возбудитель выделен от 103 видов животных и
регистрируется в свыше чем, в 65 странах мира, в различных природных ареалах.
Листерии весьма устойчивы к неблагоприятным факторам окружающей среды. Наряду с
традиционными представлениями взаимосвязи листерий с животными, некоторые
исследователи (Гершун В.И., 1981, Литвин В.Ю., 1996) рассматривают листериоз
как типичную сапронозную инфекцию [1,2].
В.Гершун установил, что молочнокислые
бактерий подавляют развитие листерий в кукурузном соке в результате понижения
рН среды и образования антибиотических веществ [1].
Последние десятилетия во всех развитых
странах уделяется очень большое внимание исследованию к практическому
использованию молочнокислых бактерий в медицине и животноводстве.В связи с этим была поставлена цель изучить влияние молочнокислых бактерий на
жизнеспособность листерий в обрате.
Для опыта использовали
36 проб стерилизованного и сырого обрата, полученный из коровьего
молока. Обрат с рН
6,8-7,3 разливали во флаконы и вносили в них стандартную сухую заквасочную культуру «Бифидум» (Streptococcus thermophilus, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum), в виде порошка при помощи
бактериологической петли. Каждую
пробу инфицировали листериями из расчета 0,15-0,21 тыс.КОЕ/мл и выдерживали в
условиях холодильника 4оС, при комнатной температуре 180С,
и в термостате 370С в течение 7 суток. В первый
день, а затем через каждые 2 дня определяли рН обрата и концентрацию в нем
листерий. В качестве контроля использовали обрат инфицированный культурой
только возбудителя листериоза.
В опыте использованы 3 музейных штамма Listeria monocytogenes из коллекции кафедры ветеринарной санитарии КГУ им. А. Байтурсынова,
которые в соответствии с паспортными данными обладали типичными
морфологическими, культуральными, биохимическими и патогенными свойствами. Для
культивирования и выделения листерий из исследуемых объектов производили посевы
на пластинки МПА с 0,004% налидиксовой
кислотой. Результаты исследования влияния молочнокислых бактерий на
жизнеспособность листерий в стерильном
обрате отражены в табл. 1.
Таблица 1 - Влияние молочнокислых бактерий
«Бифидум» на жизнеспособность
листерий в стерильном обрате
|
t 0 режим |
пробы |
0 сутки |
1 сутки |
3 сутки |
5 сутки |
7 сутки |
|||||
|
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
||
|
опыт |
|||||||||||
|
4 0 С |
3 |
6,8-6,9 |
0,15±0,003 |
6,6-6,7 |
12±0,7 |
6,6-6,7 |
75±3,5 |
6,5-6,6 |
300±6,2 |
6,6-6,7 |
420±7,2 |
|
18 0 С |
3 |
6,8-6,9 |
0,15±0,003 |
6,1-6,2 |
28,5±0,8 |
4,9-5,0 |
75±3,4 |
4,7-4,8 |
25±3,1 |
4,5-4,6 |
0,8±0,1 |
|
37 0 С |
3 |
6,8-6,9 |
0,15±0,003 |
4,5-4,7 |
85±3,8 |
3,8-3,9 |
110±20 |
3,6-3,7 |
- |
3,3-3,4 |
- |
|
контроль |
|||||||||||
|
4 0 С |
3 |
6,9-7,1 |
0,15±0,006 |
6,9-7,1 |
11±0,7 |
6,9-7,1 |
150±30,9 |
6,9-7,1 |
310±6,8 |
6,9-7,1 |
546,7±30,9 |
|
18 0 С |
3 |
6,9-7,1 |
0,15±0,006 |
6,9-7,1 |
37,5±1,6 |
6,9-7,1 |
750±35,9 |
6,9-7,1 |
4200±134,5 |
6,9-7,1 |
6200±154,5 |
|
37 0 С |
3 |
6,9-7,1 |
0,15±0,006 |
6,9-7,1 |
152±30,2 |
6,9-7,1 |
1750±154,5 |
6,9-7,1 |
8200±164,5 |
6,9-7,1 |
12200±174,5 |
В результате комплексного воздействия молочнокислой микрофлоры в пробах
стерилизованного обрата при 4°C рН незначительно
понижалась и колебалось в пределах 6,5-6,7. В этих пробах в течение опыта
отмечалось незначительное размножение листерий (12±0,7-420±7,2) КОЕ/мл.
Концентрация их незначительно отмечалась от контрольных проб при этом
температурном режиме.
При 18°C под влиянием молочнокислых
бактерий рН проб понижалась до 4,5-4,6, а концентрация после незначительного
повышения понижалась до 0,8±0,1 КОЕ/мл. В аналогичных
условиях в контрольных пробах обрата отмечалось интенсивное размножение
листерий, концентрация которых достигала 6200±154,5 КОЕ/мл.
В условиях
термостата при 37°C отмечалось
значительное понижение рН проб до 3,3-3,7, при которой листерии погибали. В
аналогичных контрольных пробах отмечалось интенсивное размножение листерий,
концентрация которых достигала 12200±174,5 КОЕ/мл.
Исследования показали, что в стерилизованных пробах обрата
молочнокислые бактерии значительно угнетали развитие листерий при комнатной
температуре, а в условиях термостата вызывали их гибель в результате
значительного понижения рН проб. В этих пробах в холодильнике молочнокислые
бактерии не оказывают существенного воздействия на листерий.
Результаты исследования влияния молочнокислых бактерий на
жизнеспособность листерий в
сыром обрате отражены в табл. 2.
|
t 0 режим |
пробы |
0 сутки |
1 сутки |
3 сутки |
5 сутки |
7 сутки |
|||||
|
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
рН |
тыс. КОЕ/мл. |
||
|
опыт |
|||||||||||
|
4 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,2±0,006 |
7,1-7,2 |
7,5±0,3 |
6,7-6,9 |
95±3,1 |
5,6-5,8 |
125±14,5 |
3,0-3,9 |
51,7±4,7 |
|
18 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,2±0,006 |
5,0-5,9 |
200±35,9 |
4,8-4,9 |
350±15,5 |
4,6-4,8 |
75±0,31 |
4,3-4,5 |
- |
|
37 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,2±0,006 |
4,1-4,3 |
250±30,9 |
3,6-3,8 |
150±17,5 |
3,4-3,6 |
- |
3,0-3,2 |
- |
|
контроль |
|||||||||||
|
4 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,21±0,006 |
6,0-6,9 |
45±3,1 |
6,9-7,0 |
236,7±21,7 |
6,3-6,5 |
400±15,4 |
5,1-5,3 |
320±12,4 |
|
18 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,21±0,006 |
5,1-5,3 |
150±30,9 |
5,1-5,2 |
200±34,9 |
5,0-5,1 |
1250±154,5 |
4,9-5,0 |
620±14,4 |
|
37 0 С |
3 |
7,2-7,3 |
0,21±0,006 |
4,5-4,6 |
1200±123,6 |
4,0-4,1 |
723,4±18,5 |
3,6-3,8 |
341,7±23,2 |
3,4-3,5 |
- |
Таблица 2 - Влияние
молочнокислых бактерий «Бифидум» на жизнеспособность листерий в сыром обрате
В сыром обрате молочнокислые бактерии угнетали развитие
листерий, которое проявлялось значительно сильнее, чем в контрольных пробах в
результате спонтанного скисания.
В опытных
пробах сырого обрата при 4°C рН понижалась и составляла на 7
сутки 3,0-3,9, и в них отмечалось размножение листерий (51,7±4,7)
КОЕ/мл. Концентрация
их была значительно ниже, чем в контрольных пробах 320±12,4 КОЕ/мл.
В опытных пробах при 18°C отмечалось значительное понижение рН проб до 4,3-4,5, при которой
листерии погибали. В аналогичных условиях
в контрольных пробах обрата рН понижалась до 4,9-5,0 и отмечалось размножение
листерий, концентрация которых была относительно высокой 620±14,4
КОЕ/мл.
В условиях
термостата при 37°C отмечалось
значительное понижение рН опытных проб до 3,0-3,6, при которой листерии на 5
сутки погибали. В контрольных пробах отмечалось понижение рН до 3,4-3,5, при
которой листерии погибали на 7 сутки опыта.
Таким образом, заквасочная
культура «Бифидум» вызывала в
стерилизованном и сыром обрате угнетение листерий или их гибель.
Литература:
1. Гершун В.И. Листериоз сельскохозяйственных животных.- Алма-ата:
Кайнар, 1981. -96 с.
2.
Литвин В.Ю., Патогенные бактерии, общие для человека и растений:
проблемы и факты // Микробиология, 1996.- №2.-с.76