Медицина/8.
Морфология
Д.м.н. Тихонов И.В., к.б.н. Казаков О.В.
ЗАО «Санаторий-профилакторий
«Станкостроитель», Барнаул, Россия,
ГУ Научно-исследовательский институт
клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН, Новосибирск, Россия.
Регионарные лимфатические узлы простаты при экспериментальном
дисциркуляторном простатите и в условиях его коррекции КВЧ- и низкоинтенсивным
лазерным излучением
Проблема
хронического простатита имеет огромное социальное значение. По данным ряда
авторов, воспалительные процессы предстательной железы занимают одно из первых
мест среди патологии мужских мочеполовых органов и составляют 21% от всех
урологических заболеваний [7]. Основным фактором, способствующим развитию
хронического простатита, является застой венозной крови в малом тазу [5]. Это
сопровождается эндотоксикозом, приводит к нарушению деятельности
микроциркуляторного русла, лимфатической системы [2, 4]. Нами была разработана
экспериментальная модель дисциркуляторного простатита (ЭДП) в результате
формирования экспериментального венозного застоя в малом тазу (Тихонов И.В.,
2008) у лабораторных животных. Актуальным представляется проведение
морфологического исследования регионарного лимфатического русла простаты в
результате коррекции ЭДП факторами физического воздействия: низкоинтенсивным
гелий-неоновым лазерным излучением (Ge-Ne НИЛИ) и электромагнитным излучением крайневысокочастотного диапазона
(ЭМИ КВЧ), которые ранее уже использовались при лечении больных хроническим
простатитом [1, 3, 8, 9].
Исследование
подвздошных лимфатических узлов (в качестве регионарных лимфатических узлов
простаты) позволило бы выявить структурно-клеточные преобразования в
лимфатическом регионе, дренирующем тазовые конечности и органы малого таза
лабораторных животных через обширные лимфатические сплетения, расположенные
около семенниковой или яичниковой вен. Подвздошные лимфатические узлы являются
узлами II-го порядка для лимфы прошедшей через тазовые, ягодичные и подколенные
лимфатические узлы [10].
Целью данной работы явилось структурное исследование подвздошных
лимфатических узлов при коррекции ЭДП в
условиях венозного застоя в малом тазу Ge-Ne НИЛИ и ЭМИ КВЧ.
Материалы и методы исследования
Исследование проводили на 150 нелинейных крысах-самцах Вистар массой
220-260 г. Все экспериментальные исследования осуществлялись в соответствии с
правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных
(Приложение к приказу Министерства здравоохранения СССР от 12.08.1977 г. №
755). Животные были разбиты на 5 групп по 30 в каждой: 1 группа - интактные животные (контроль); 2 группа -
экспериментальные животные на 21 сутки ЭДП в условиях венозного застоя органов
малого таза без коррекции; 3 и 4 группа - экспериментальные животные с ЭДП на
21 сутки, которым ежедневно, начиная со второй недели, в проекции простаты
производилось чрезкожное воздействие ЭМИ КВЧ (3-я
группа) и Ge-Ne НИЛИ (4-я группа); 5 группа - экспериментальная
группа ложнооперированных животных на 21 сутки эксперимента. Формирование ЭДП
проводилось под нембуталовым наркозом (40 мг/кг веса внутрибрюшинным введением)
по оригинальной методике (Тихонов И.В., 2008). Для создания венозного застоя в
малом тазу проводили срединную лапаротомию у животных, затем послойно выделяли
общие подвздошные вены в месте бифуркации нижней полой вены; дистальнее
определяли и тупым способом выделяли внутренние подвздошные вены с обеих сторон
и производили их лигирование. Осуществляли гемостаз, послойное ушивание раны,
обработку антисептиком. У ложнооперированных животных воспроизводили все
хирургические манипуляции без лигирования вен.
Гелий-неоновое лазерное воздействие проводилось на наркотизированных
животных. Выходная мощность лазерного излучения выбиралась таким образом, чтобы
диаметр светового пятна был достаточно большим - 2 см. Это позволяло охватить значительную часть
области расположения простаты. Плотность потока мощности лазерного излучения 25
мВт/см2, время одного сеанса - 10 минут. Эвтаназия животных
осуществлялась под нембуталовым наркозом. Для гистологического исследования
забирали подвздошные лимфатические узлы [10]. В группе с коррекцией Ge-Ne НИЛИ и
ЭМИ-КВЧ забор лимфатических узлов производился на следующие сутки после
последнего сеанса облучения. По стандартной гистологической методике выполняли
проводку материала, заливали объекты исследования в парафиновые блоки, с которых
делали гистологические срезы толщиной 5 - 7 мкм. Срезы окрашивали гематоксилин
- эозином и азур II - эозином [6]. С помощью
окулярной тестовой системы производили морфометрию срезов и подсчет клеточных
элементов в отдельных структурно - функциональных зонах исследуемых
лимфатических узлов. Статистическую обработку данных проводили с помощью t-критерия Стьюдента для зависимых выборок и определяли
значимость различий (р – стандартная ошибка среднего). Критический уровень
значимости в данном исследовании принимался р < 0,05.
Результаты исследования и обсуждение
Во II группе животных (на 21 сутки
ЭДП) тип структурно-функциональной организации подвздошных лимфатических узлов
не изменяется, по отношению к интактной группе животных (фрагментированный тип
по классификации академика Ю.И.Бородина, 1969), с корково-мозговым индексом -
0,49. Отмечаются структурные признаки угнетения клеточного звена иммунитета:
уменьшается площадь паракортикальной зоны на 27,3%, а также - относительная
площадь коркового вещества; мозговое вещество не имеет достоверных отличий от
значений группы контроля (таблица 1). Восстанавливается транспорт лимфы через
лимфатический узел: площади мозговых и краевого синусов на имеют достоверных
отличий от интактной группы. В структурно-функциональных зонах подвздошных
лимфатических узлов через 21 сутки ЭДП в условиях экспериментального венозного
застоя в малом тазу (таблица 2) выявлена активность процессов пролиферации
(увеличивается численность незрелых форм клеток плазматического рядов),
увеличивается число клеток на стадии митоза. Макрофагальная реакция выражена
только в мозговом веществе.
В III группе животных (на 21 сутки
ЭДП в условиях коррекции ЭМИ КВЧ) структурно-функциональная организация
подвздошных лимфатических узлов соответствует фрагментированному типу. В
лимфатических узлах, по сравнению с интактными животными, отмечаются
структурные признаки активации гуморального звена иммунитета (увеличена площадь
мантийной зоны (в 2,4 раза) на фоне сохранения площади вторичных лимфоидных
узелков, увеличения площади мозговых тяжей, В- зависимой зоны). В лимфатических
узлах преобладает прямой путь транспорта лимфы: увеличивается площадь краевого
(в 3 раза) на фоне сохранения площади мозговых синусов. Значительно увеличивается
площадь соединительнотканных элементов. В структурно-функциональных зонах
подвздошных лимфатических узлов отмечается активация процессов
бласттрансформации клеток лимфоидного ряда (в герминативных центрах отмечается
уменьшение числа средних и увеличение - малых лимфоцитов и клеток на стадии
митоза). Увеличение числа плазмобластов, митотической активности клеток в
мозговых тяжах свидетельствует об активации процессов пролиферации и
бласттрансформации. По сравнению с 21 сутками ЭДП без коррекции в подвздошных
лимфатических узлах в условиях коррекции ЭМИ КВЧ выявлены структурные признаки
активации гуморального звена иммунитета (увеличена площадь В - зависимой зоны
на 16,5%, вторичных лимфоидных узелков - на 21,7%, мозговых тяжей - на 19,5%).
В лимфатических узлах еще более возрастает прямой путь транспорта лимфы
(относительная площадь мозговых синусов уменьшается – на 14,8%, а краевого
синуса увеличивается – в 2,7 раза). По сравнению с группой без коррекции, в
структурно-функциональных зонах подвздошных лимфатических узлов отмечается
активация процессов пролиферации (увеличивается численность плазмобластов) и
бласттрансформации (увеличивается число зрелых форм клеток лимфоидного и
плазматического рядов).
В IV группе животных (на 21 сутки
ЭДП в условиях коррекции Ge-Ne НИЛИ) структурно-функциональная специализация
подвздошных лимфатических узлах соответствует фрагментированному типу. При этом
корково-мозговое соотношение лимфатических узлов самое низкое (0,2) в сравнении
с другими экспериментальными группами с коррекцией (таблица 1). По сравнению с
другими экспериментальными группами транспорт лимфы через лимфатические узлы
значительно увеличен. В подвздошных лимфатических узлах, как и при
КВЧ-воздействии, отмечаются схожие структурные признаки активации гуморального
звена иммунитета. Капсула утолщена. В структурно-функциональных зонах
подвздошных лимфатических узлов, по сравнению с интактными животными, выявлено
усиление процессов бласттрансформации (увеличивается количество малых
лимфоцитов в мозговых тяжах, зрелых плазмоцитов в мозговых синусах, усиление
митотической активности клеток). Значительно увеличивается численность
макрофагов. По сравнению с 21 сутками экспериментального венозного застоя без
коррекции в подвздошных лимфатических узлах увеличен транспорт лимфы через
лимфатические узлы (возрастают площади мозговых на 26,45% и краевого синусов в
3,6 раза), отмечаются структурные признаки относительного уменьшения площади
тимусзависимой зоны (на 68,5%) и активации гуморального звена иммунитета (увеличена
площадь мантийной зоны на 95,9%, мозговых тяжей - на 11,6%). В
структурно-функциональных зонах подвздошных лимфатических узлов, отмечается
снижение активности процессов пролиферации (уменьшено незрелых форм клеток
лимфоидного и плазматического рядов) и активация бласттрансформации
(увеличивается количество малых лимфоцитов в мозговых тяжах, зрелых плазмоцитов
в мозговых синусах).
Заключение
Особенность структурной реакции подвздошных лимфатических узлов при ЭДП
в условиях венозного застоя органов малого таза (на 21 сутки) выражается в
гипоплазии компонентов, ответственных за Т- звено иммунного ответа (уменьшении
площади паракортикальной зоны), тенденции к восстановлению структурных
соотношений компонентов лимфатических узлов, что позволяет заключить об активации
естественных защитных сил организма, направленных на уменьшение степени
проявлений эндогенной интоксикации.
Использование ЭМИ-КВЧ- и Ge-Ne НИЛИ в качестве факторов коррекции ЭДП в условиях
экспериментального венозного застоя в малом тазу (на 21 сутки) вызывает в
подвздошных лимфатических узлах структурную реакцию, характеризующуюся: 1)
гиперплазией отделов паренхимы лимфатических узлов, ответственных за В- звено
(увеличены площади вторичных лимфоидных узелков, мозговых тяжей, В- зависимой
зоны); 2) относительным уменьшением площади паракортикальной зоны, наиболее
выраженным при коррекции Ge-Ne НИЛИ; 3) увеличением численности зрелых эффекторных
лимфоидных клеток и макрофагов; 4) изменением транспортного потенциала
(преобладании прямого пути транспорта лимфы при коррекции ЭМИ КВЧ, увеличении
площади всей синусной системы при Ge-Ne НИЛИ).
Таким образом, на основании полученных данных, можно заключить, что
применение как ЭМИ КВЧ-, так и Ge-Ne НИЛИ в качестве факторов коррекции ЭДП, позволяет
значительно усилить естественный дренажно-детоксикационный потенциал
регионарных лимфатических узлов простаты за счет адаптивных
структурно-функциональных перестроек, сопровождающихся увеличением их
транспортной функции, способствуя уменьшению проявлений эндогенной интоксикации
организма, устранению патологических изменений в лимфатическом регионе.
Таблица 1.
Структурно-функциональные зоны подвздошных лимфатических узлов при ЭДП в условиях венозного застоя в малом тазу (на 21 сутки) при КВЧ- и гелий-неоновом лазерном воздействии (M±m) (%).
|
Показатели |
Интактные животные |
21 сутки ЭДП |
21 сутки ЭДП + ЭМИ КВЧ |
21 сутки ЭДП + Ge-Ne НИЛИ |
|
Герминативный центр
вторичных лимфоидных узелков |
6,15±0,37 |
5,71±0,21 |
3,81±0,13 * |
3,93±0,18 * |
|
Мантий вторичных
лимфоидных узелков |
1,95±0,02 |
1,34±0,18 * |
4,77±0,17 *· |
3,82±0,14 * |
|
Вторичные лимфоидные узелки |
8,1±0,35 |
7,05±0,26 |
8,58±0,31 · |
7,75±0,33 |
|
Первичные лимфоидные узелки |
1,22±0,09 |
0,97±0,09 |
2,63±0,12 *· |
1,87±0,11 *· |
|
Корковое плато |
1,91±0,02 |
2,65±0,07* |
2,38±0,12 * |
2,48±0,1 * |
|
Паракортикальная зона |
28,33±1,63 |
20,59±0,36* |
12,24±0,52 *· |
6,48±0,2 *· |
|
Мозговые тяжи |
37,66±1,67 |
40,0±1,2 |
47,81±0,43 *· |
44,64±0,74 *· |
|
Мозговой синус |
20,48±0,87 |
22,98±0,48 |
19,58±0,68 · |
29,06±0,56 *· |
|
Краевой синус |
0,99±0,02 |
1,07±0,07 |
2,9±0,13 *· |
3,85±0,12 *· |
|
Капсула |
1,09±0,02 |
4,49±0,25 * |
3,02±0,13 *· |
3,71±0,14 * |
|
Трабекулы |
0,19±0,08 |
0,2± 0,08 |
0,86±0,11 * |
0,16±0,04 |
|
Соединительно-тканные
элементы |
1,29±0,02 |
4,69±0,13 * |
3,88±0,24 * |
3,87±0,17 *· |
|
В-зона |
46,9±0,9 |
50,67±1,57* |
59,02±0,86 *· |
54,26±1,19 * |
|
Корковое вещество |
39,0±0,59 |
31,26±0,95* |
25,83±1,07 *· |
14,58±0,75 *· |
|
Мозговое вещество |
59,14±1,27 |
62,98±2,21 |
67,39±1,12 * |
73,7±1,31 *· |
|
Корково/мозговой индекс |
0,66±0,02 |
0,49±0,03 |
0,38±0,05 |
0,2±0,05 |
Примечание: «*» - уровень значимости различий групп
животных с коррекцией ЭДП по сравнению с интактными животными, р< 0,05; «·» - уровень значимости различий групп
животных с коррекцией ЭДП по сравнению с экспериментальной группой 21 суток ЭДП
без коррекции, р< 0,05.
Таблица 2.
Цитоархитектоника
структурно-функциональных зон подвздошных лимфатических узлов в условиях
венозного застоя (21 сутки) в малом тазу и лазерной коррекции (M±m) (%).
|
Показатели |
Интактные животные |
21 сутки ЭДП |
21 сутки ЭДП + ЭМИ КВЧ |
21 сутки ЭДП + Ge-Ne НИЛИ |
|
Герминативный центр вторичных лимфоидных узелков |
||||
|
Лимфобласты |
9,31±0,42 |
10,92±0,41 |
7,67±0,31*· |
6,87±0,18 *· |
|
Средние лимфоциты |
19,54±0,53 |
19,78±0,6 |
10,82±0,71 *· |
12,84±0,62 *· |
|
Малые лимфоциты |
66,64±0,69 |
63,29±1,41 |
72,87±1,6 *· |
70,03±1,7 · |
|
Макрофаги |
3,59±0,05 |
4,11±0,23 |
4,48±0,12 * |
5,21±0,15 *· |
|
Ретикулярные клетки |
0,4±0,001 |
0,89±0,44 |
3,23±0,14 *· |
4,14±0,11 *· |
|
Митозы |
0,71±0,01 |
1,01±0,05 * |
0,93±0,01 *· |
0,91±0,01 · |
|
Мозговые тяжи |
||||
|
Средние лимфоциты |
6,23±0,34 |
18,43±0,68* |
13,99±0,22 *· |
12,46±0,22 · |
|
Малые лимфоциты |
24,93±0,85 |
16,63±0,6 * |
18,93±0,4 *· |
34,23±0,4 *· |
|
Макрофаги |
1,65±0,12 |
4,31±0,14 * |
3,75±0,31 * |
3,62±0,31 * |
|
Ретикул. клетки |
3,35±0,12 |
6,34±0,23 * |
4,25±0,11 *· |
3,93±0,12 *· |
|
Плазмобласты |
2,48±0,05 |
4,31±0,09 * |
7,41±0,12 *· |
4,51±0,1 * |
|
Незрелые плазмат. клетки |
12,82±0,52 |
18,7±0,58 * |
6,77±0,11 *· |
6,05±0,23 *· |
|
Зрелые плазмат. клетки |
47,92±1,2 |
30,3±0,84* |
44,08±1,5 *· |
34,36±1,4 * |
|
Митозы |
0,62±0,04 |
0,98±0,03 * |
0,82±0,05 * |
0,84±0,01 *· |
|
Мозговые синусы |
||||
|
Средние лимфоциты |
3,23±0,12 |
3,11±0,22 |
5,88±0,13 *· |
7,24±0,14 *· |
|
Малые лимфоциты |
47,22±0,55 |
40,4±0,94 * |
31,6±0,44 *· |
27,05±0,34 *· |
|
Макрофаги |
1,54±0,02 |
3,37±0,13 * |
2,06±0,01 *· |
2,19±0,01 *· |
|
Ретикул. клетки |
3,08±0,04 |
4,47±0,23 * |
12,6±0,16 *· |
5,72±0,01 *· |
|
Тучные клетки |
0,55±0,02 |
0,83±0,09 |
0,38±0,01 *· |
0,34±0,005 *· |
|
Плазмобласты |
1,3±0,08 |
1,36±0,02 |
3,13±0,02 *· |
5,56±0,02 *· |
|
Незрелые плазмат. клетки |
10,55±0,25 |
13,41±0,45 * |
9,39±0,47 · |
11,11±0,37 · |
|
Зрелые плазмат. клетки |
32,49±0,31 |
33,05±0,58 |
34,96±0,35 *· |
40,8±0,52 *· |
Примечание: «*» - уровень значимости различий групп животных с
коррекцией ЭДП по сравнению с интактными животными, р< 0,05; «·» - уровень значимости различий групп
животных с коррекцией ЭДП по сравнению с экспериментальной группой 21 суток ЭДП
без коррекции, р< 0,05.
Литература:
1. Байбеков И.М, Касымов А.Х., Козлов В.И. и др. Морфологические основы
низкоинтенсивной лазеротерапии. Ташкент: изд. им. Ибн Сины, 1991. 224 с.
2. Бородин Ю.И., Асташов В.Н., Горчаков В.Н., Асташова Т.А., Рачковская
Л.Н., Старкова Е.В. Программа оздоровительных мероприятий по лимфосанации и
детоксикации организма в ГУ НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО
РАМН. – Новосибирск: ИПП «Манускрипт». - 2004. - 70 с.
3. Дунаевский Я.Л., Сегал А.С., Семенова Л.С. Физиотерапевтическая
аппаратура: применение и перспективы развития на современном этапе. - М., 1993.
- С. 32-33.
4. Левин Ю.М. Лечение, оздоровление и профилактика в условиях кризиса
экологии организма.- М.: изд-во МГОУ, 1996.- 316 с.
5. Ломшаков А.А. Физическое воздействие на кровообращение
предстательной железы при хроническом простатите // Автореф… дисс. канд. мед.
наук. - Новосибирск, 2000. - 17 с.
6. Микроскопическая техника: Руководство / Под ред. Д.С.Саркисова и
Ю.Л.Перова.- М.: Медицина, 1996.- 544 с.
7. Неймарк А.И., Александров В.В. Хронический простатит и его лечение с
использованием продуктов пантового оленеводства. – Барнаул: Изд-во Алт. Ун-та,
1995. – 58 с.
8. Неймарк А.И., Ломшаков А.А., Гаткин М.Я. Воздействие лазеротерапии
на гемодинамику и васкулярезацию простаты у больных хроническим простатитом //
1-я Поволжская научно-практическая конференция «Лазеры в медицине и экологии».
– Самара, 1998. – С. 41.
9. Неймарк А.И., Неймарк Б.А. Эфферентная и квантовая терапия в
урологии. М.: Медицинское информ. агенство – 2003 – 228 с.
10. Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л. Анатомия крысы (лабораторные
животные). - СПб.: Издательство «Лань». - 2001. - 464 с.