Биологические науки/ Физиология человека и животных
Д.с.-х.н. Мамукаев М.Н., к.с.-х.н.
Тохтиев Т.А., к.б.н. Арсагов В.А., студентка магистратуры Мамукаева Д.Р.
Горский Государственный Аграрный Университет
Физиологическое
обоснование применения лазера «Матрикс» и лампы ДРТ-400 в птицеводстве:
гематологические аспекты
Обоснование применения лазерного аппарата «Матрикс»,
который широко используется в медицинской практике для лечения болезней
сердечно-сосудистой, дыхательной, нервной систем, а также различных
патологических процессов (А.В. Гейниц и
др., 2006; Ю.В. Голубенко и др., 2006; С.В. Москвин и др., 2006), требует
сравнения с широко известным биотическим средством светом ртутно-кварцевой
лампы ДРТ-400, применение которой дает высокие результаты повышения
биоресурсного потенциала животных и птицы. ( М.Н. Мамукаев, 1996; А.А.
Прокопенко, 1997; Е.М.Mester et. al., 1978 ).
Для организации исследований
изготовлена экспериментальная установка, представленная на рисунках 1,2.
Техническая характеристика установки
Облучение
эмбрионов и суточных цыплят лучистой энергией осуществляли в изготовленной
экспериментальной установке конвейерного типа (рис.1), которая состоит из
металлического каркаса (1), лазера «Матрикс» (9), блока питания и регулирования
лазера «Матрикс» (8), излучающего устройства (9), газоразрядной лампы ДНЕСГ-500
(10), электродвигателя транспортирующего устройства (4), редуктора (3), цепного
транспортера (12), пульта управления (6), электромагнитного пускателя КМЗ-2
(5), камеры подсветки (7), подставок (2) со стороны пульта управления и
принятия лотков из камеры подсветки после облучения, ртутно - кварцевой лампы
ДРТ-400 (14) и блока питания лампы ДРТ-400 (15).
Работа установки
Посредством
пульта управления (рис.2) подается напряжение в установку, тумблерами ТВ-2 и
ТВ-3 включаются лазер «Матрикс», газоразрядная лампа ДНЕСГ-500 и
ртутно-кварцевая лампа ДРТ-400 и через
8 минут установка готова к эксплуатации.
Лотки с
инкубационными яйцами–(11) и суточными цыплятами–(13) подаются на цепной
транспортер–(2) и передвигаясь по камере подсветки – (7), подвергаются
облучению некогерентным красным светом длиной волны 630-650 нм, средней дозой
23,1 эрг газоразрядной лампы ДНЕСГ-500–( 10) и когерентным поляризованным
красным светом длиной волны 630 нм, средней дозой 20 мВт/см² лазера
«Матрикс»-9, ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400–(14), затем транспортирующим
механизмом, скорость которого регулируется посредством кнопок магнитного
пускателя КМЗ-2–(5), выдвигаются на подставки–(2) с противоположной стороны от
пульта управления и используются в дальнейшем технологическом процессе.
В обосновании
применения лазера «Матрикс» в птицеводстве важное значение имеет выявление
механизмов действия испытуемого источника лучистой энергии, для чего одной из
первостепенных значений имеют гематологические показатели цыплят-бройлеров.
Для организации исследований формировалось 5 групп яиц
– аналогов по 144 яйца, соответствующие требованиям качественных показателей,
из которых:
1 группа служила контролем;
2 группу облучали лазером «Матрикс»
3 группу газоразрядной лампы ДНЕCГ-500
4 группу ультрафиолетовым светом ртутно-кварцевой
лампы ДРТ-400
5 группу лазером «Матрикс», лампами ДНЕСГ-500 и
ДРТ-400 в экспозициях по 3 минуты.
В такой же
последовательности, в тех же экспозициях обрабатывали развивающихся эмбрионов в
возрасте 6, 12, 18 дней и суточных цыплят.
Исследования
проводились в 3 повторностях.
Результаты исследования морфологических
показателей крови цыплят-бройлеров в онтогенезе при воздействии лучистой
энергии отражены в табл. 1.
В
эритропоэзе эмбрионов опытных и контрольной группы 6-дневных эмбрионов
существенных различий не зарегистрировано при исследованиях и колебалось в пределах 0,40-0,44*1012/л.
У 12-дневных
эмбрионов содержание эритроцитов в контрольной группе составило 1,47*1012/л,
что по сравнению со 2 группой - на 0,09*1012/л (Р<0,05), 3 группой
- на 0,103*1012/л (Р>0,05), 4- на 0,06*012/л и 5- на 0,15*1012/л;
среднесуточная выработка эритроцитов эмбрионов носил динамичный характер и
составил – 0,122*1012/л в день в контрольной группе, 0,130*1012/л
в день во 2 группе , 125 тыс./день в 3 группе, в 4-0,127*1012/л в
день и в 5- 0,135*1012/л в день.
Более
высокое содержание эритроцитов в крови опытных групп по сравнению с контрольной
в процессе инкубирования сохраняется и у 18-дневных эмбрионов, в 2 группе
разница составила 7,00% (Р<0,05) в 3 -4,52% (Р>0,05),в 4—3,66%
(Р<0,05) и в 5-9,52%(Р<0,05); а среднесуточное нарастание изучаемого
показателя составило от 0,135 1012/л (1 группа) до 0,166 1012/л
(5группа) и носилo стабильный характер. Содержанию
эритроцитов с 18 до 21 дня инкубации характерно некоторое угнетение, что
очевидно связано со стрессом при переводе эмбрионов из инкубационных на
выводные шкафы. Среднесуточный прирост эритроцитов в контрольной группе если с
12 по 18 день инкубации составил 0,210 1012/л в день, то с 18 до 21
дня инкубации 0,097 1012/л в день.
Аналогичные показатели составили соответственно в группе применения лазера
«Матрикс» 0,223 и 0,156 1012/л в день, газоразрядной лампы ДНЕСГ-500
– 0,190 и 0,183 1012/л.
К концу эмбрионального периода развития эритропоэз выявил более высокие
показатели в опытных группах. Если содержание эритроцитов составило у суточных
цыплят контрольной группы 3,02 1012/л, то при облучении эмбрионов
излучением лазера «Матрикс» эритроцитов в крови было больше на 0,350 1012/л,
газоразрядной лампы - на 0,17 1012/л, ртутно-кварцевой лампы- на
0,310 1012/л , при комплексном облучении- на 0,66 1012/л.
До 14 дня выращивания цыплят-бройлеров нарастание количества эритроцитов
составила в контрольной группе 0,99%, во 2 группе – 1,48% и в 3 группе – 1,25%,
в 4- 7,51% и в 5-2,45%. С 14 до 28 дневного возраста аналогичная динамика
содержания эритроцитов сохраняется и прирост показателя во 2 и 3 опытных
группах составил 4,09% и 3,10% против показателя контрольной группы – 2,95%. В
4 и 5 группах показатели были равны.
С 28 по 42 день откорма бройлеров прирост количества эритроцитов был более
активным в контрольной группе и составил 8,60% против показателей 2, 3, 4 и 5
опытных групп 5,06 , 5,71% и 3,43% при сохранении высоких показателей
эритроцитов в опытных группах.
Воздействие лазера «Матрикс» и газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 на образование
лейкоцитов до 18 дня эмбрионального периода развития существенного влияния не
оказали. Нарастание количества лейкоцитов у эмбрионов носило динамичный
характер во всех подопытных группах.
У эмбрионов 6-дневного возраста среднесуточный прирост лейкоцитов составил
0,2-0,6 109/л без особых колебаний в подопытных группах. Аналогичная
картина наблюдается и в 12-дневном возрасте с той разницей, что среднесуточная
выработка составила 0,043-0,049 109/л. Прирост количества лейкоцитов
с 6 до 12-дневного возраста эмбрионов
составил в 1 группе 1,53 раза, во 2- 1,72 раза, в 3- 1,66 раза, в 4-1,68 раз и
в 5 группе-1,70 раз.
Лейкопоэз эмбрионов в период с 12 до 18 суток развития снижался. В
контрольной группе снижение среднесуточного прироста показателя составил 1,22
раза, в группе воздействия лазером «Матрикс»-1,19 раза, газоразрядной лампой
ДНЕСГ-500 -1,15 раз, лампой ДРТ-400-1,17 раз, при комплексном воздействии- 1,19
раз.
С 18 дня инкубирования яиц до вывода, образование лейкоцитов резко возросло
и составило в контрольной группе 0,61 109/л при воздействии лазером
«Матрикс»-0,05 109/л (Р<0,05), газоразрядной лампой ДНЕСГ-500 -
0,058 109/л, лампой ДРТ-400 – 0,167 109/л в день и при
комплексном облучении-1,87 109/л; а прирост к показателям 18-дневных
эмбрионов составил соответственно 1,29; 1,22; 1,27 ;1,25; и 1,19 раз.
У суточных бройлеров показатель лейкоцитов по сравнению с контрольной группой был выше на 3,22% в группе воздействия
лазера «Матрикс» (Р<0,05), на 1,73% (Р>0,05)- при облучении газоразрядной
лампойДНЕСГ-500, на 4,43%- при облучении лампой ДРТ-400 (Р<0,05) и на 8,54
%(Р<0,01) при комплексном воздействии.
В постнатальный период развития бройлеров содержанию лейкоцитов характерно
интенсивное нарастание во всех подопытных группах. Прирост содержания
лейкоцитов по сравнению с показателем суточных цыплят составил у 14 дневных
бройлеров в 1 группе – 1,72 раза, во 2 – 2,01 раз, 3 – 1,88 раз, в 4- 1,99 раз и в 5 группе- 1,93 раз; у
28 дневных бройлеров относительно 14 дневных – 2,16 раза, 2,066; 2,13; 2,09 и
2,19 раз соответственно.
Количество лейкоцитов у 42 дневных бройлеров по сравнению с показателем
контрольной группы во 2 группе был больше на 2,17 109/л, в 3 группе
– на 1,46 109/л, в 4 группе- на 1,17 109/л и в 5- на 1,17
109/л.
Исследования содержания гемоглобина у эмбрионов, подвергнутых воздействию
лучистой энергией показали, что у 12-дневных эмбрионов по сравнению с контрольной
группы гемоглобина было больше при воздействии лазером «Матрикс» на 9,9 г/л
(Р<0,05), газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 - на 6,2 г/л (Р>0,05),
газоразрадной лампы ДРТ-400 на 8,2г/л и
при комплексном облучении 13,3г/л ,что составляет соответственно 13,90 и 8,71%;
11,52 и 18,68%.
В 18-дневном возрасте зародышей, аналогичные различия содержание
гемоглобина составили 7,7 г/л (9,20%) (Р<0,05), 4,9 г/л (5,85%) (Р>0,05);
4,2г/л (Р<0,05) и 9,4г/л.
В суточном возрасте цыплят контрольной группы содержание гемоглобина
составило 91,2 г/л, что ниже показателей групп воздействия лазером «Матрикс» и
газоразрядной лампы на 11,9 г/л и 7,5 г/л соответственно, а также групп
воздействия лампы ДРТ-400- на 10,9 г/л и при комплексном облучении- на 17,5
г/л.
В постнатальном периоде развития цыплят-бройлеров наблюдается некоторое
угнетение образование гемоглобина.
Снижение концентрации гемоглобина составило с суточного до 14-дневного
возраста в контрольной группе – 0,7 г/л, во 2 группе 3,7 г/л, в 3 группе – 2,7
г/л, в 4 группе- на 2,7 г/л и в 5 группе на 2,9 г/л.
В последующие возрастные периоды наблюдаем прирост содержания гемоглобина
во всех подопытных группах с преимуществом показателей 2 группы – на 9,3 г/л, 3
группы – на 9,8 г/л, 4- на 8,3 г/л 5-
на 11,8 г/л у 28 дневных бройлеров и соответственно на 4,7 г/л , 2,7 г/л, 3,7
г/л и 6,9 г/л в конце выращивания по сравнению с контрольной группой.
Таким образом облучение эмбрионов и суточных цыплят испытуемыми источниками
лучистой энергией способствует становлению гематологических показателей, не
вызывая побочных явлений.
Список
использованной литературы:
1.
Гейниц
А.В., Москвин С.В., Азизов Г.А. Внутривенное лазерное облучение крови/ А.В.
Гейниц, С.В. Москвин, Г.А. Азизов.// Тверь: ООО «Издательство «Триада»,
2006.-144с.
2. Голубенко Ю.В., Москвин
С.В. Лазерная терапия аппаратами серии «Матрикс»./ Голубенко Ю.В., Москвин
С.В.// Тверь:
ООО «Издательство «Триада», 2006.-113с.
3. Москвин С.В., Буйлин
В.А. Лазерная терапия аппаратами серии «Матрикс»/ Москвин С.В., Буйлин В.А.//
Тверь: ООО
«Издательство «Триада», 2006.-5с.
4.
Мамукаев
М.Н. Способ вывода цыплят./ М.Н. Мамукаев.// Комитет РФ по патентам и товарным знакам. Патент №
2053665 от 10 февраля 1996 года.
5.
Прокопенко А.А. Обработка инкубационных яиц
УФ-излучением./ А.А. Прокопенко.//
Птицеводство, 1997.-№1.-с.6-7.
6. Mester E., Nagylucskay S., Tisza S., Mester A. Stimulation of wound
healing by means of laser rays. Part III. Investigation of the effect on immune
compete cells. / E. Mester, S. Nagylucskay, S. Tisza, A. Mester. //Actachir. Hung., 1978. - V.19. -
P. 163-170